ЕХОКАРДІОГРАФІЧНА ОЦІНКА ВПЛИВУ КРІОЕКСТРАКТІВ ПЛАЦЕНТИ ТА СЕЛЕЗІНКИ НА ФУНКЦІОНАЛЬНИЙ СТАН МІОКАРДУ ПРИ ЕКСПЕРИМЕНТАЛЬНОМУ АУТОІМУННОМУ МІОКАРДИТІ
DOI:
https://doi.org/10.32782/2306-2436.14.2.2024.314Ключові слова:
аутоімунний міокардит, ультразвукорве дослідження, хвилинний об’єм, ударний об’єм, фракція вкорочення, фракція викиду, кріоекстракт плаценти, кордарон.Анотація
Резюме. Міокардит залишається недостатньо вивченим захворюванням з різноманітними клінічними проявами, які часто призводять до серцевої недостатності. Більш того, останніми роками фіксується зростання захворюваності та смертності від міокардиту. Незважаючи на значні покращення в діагностиці та лікуванні, захворюваність і смертність від нього все ще є значними, тож потрібні подальші зусилля для ідентифікації прогностичних факторів короткострокового та довгострокового прогнозу з розробкою нових терапевтичних підходів. Мета роботи – охарактеризувати вплив кріоекстракту плаценти та кріоекстракту селезінки на функціональний стан міокарду за експериментального аутоімунного міокардиту за даними ехокардіографічного дослідження. Матеріали та методи дослідження. Дослідження ефективності КЕП та КЕС за АІМ проведені на 35 щурах-самцях масою 200–220 г, рандомізованих на 5 груп. Сонографічне дослідження серця проводили за допомогою ультразвукового ехотомоскопу «Сономед 500» («Полі-Спектр», Україна) у В- та М-режимах з використанням лінійного датчика 7,5L38 з частотою 7,5 МГц на 28 день експерименту, також визначали частоту серцевих скорочень (ЧСС) за хвилину. Під час дослідження тварини перебували під інгаляційним наркозом. Ультразвукове сканування проводили в площині, перпендикулярній поверхні грудної клітки з парастернального доступу по довгій осі серця. Під час дослідження в М-модальному режимі вимірювали структури порожнин серця – діаметри та дистанції. Результати та їх обговорення. Дослідження показало, що у тварин з АІМ без лікування спостерігалися значні порушення функціональних показників серця. Ударний об’єм (УО) знизився до 0,26 мл, хвилинний об’єм (ХО) зменшився на 32,4%, а фракція викиду знизилась до 37,2%, що свідчить про серйозні порушення скоротливої функції серця. Застосування КЕП привело до покращення функцій серця: УО підвищився до 0,55 мл, ХО збільшився на 97,5%, фракція викиду досягла 80,1%. КЕС також покращив функціональні показники, але ефект був менш вираженим. УО у групі КЕС становив 0,38 мл, ХО зріс на 50,5%, фракція викиду склала 60,4%. Висновки. Терапія КЕП показала значне покращення функції серця у щурів з АІМ, що виявилось у підвищенні основних функціональних показників, як-от УО, ХО, фракція вкорочення і фракція викиду. КЕС також продемонстрував позитивний ефект, але менш виражений порівняно з КЕП.
Посилання
1. Cooper L.T. Jr. Myocarditis: Entering the Mainstream. Circulation. 2024. № 149 (9). Р. 639–640. DOI: https://doi.org/10.1161/CIRCULATIONAHA.123.065484.
2. Sexson Tejtel S.K., Munoz F.M., Al-Ammouri I., Savorgnan F., Guggilla R.K., Khuri-Bulos N., Phillips L., Engler R.J.M. Myocarditis and pericarditis: Case definition and guidelines for data collection, analysis, and presentation of immunization safety data. Vaccine. 2022. № 40 (10). Р. 1499–1511. DOI: https://doi.org/10.1016/j.vaccine.2021.11.074.
3. Lynge T.H., Nielsen T.S., Gregers Winkel B., Tfelt-Hansen J., Banner J. Sudden cardiac death caused by myocarditis in persons aged 1–49 years: a nationwide study of 14,294 deaths in Denmark. Forensic Sci Res. 2019. № 4 (3). Р. 247–256. DOI: https://doi.org/10.1080/20961790.2019.1595352.
4. Ozierański K., Tymińska A., Chabior A., Kruk M., Koń B., Maciejewski C., Opolski G., Grabowski M. Sex differences in incidence, management, and outcomes in adult patients aged over 20 years with clinically diagnosed myocarditis in the last 10 years: data from the MYO PL nationwide database. Pol Arch Intern Med. 2022. № 132 (4). Р. 16199. DOI: https://doi.org/10.20452/pamw.16199.
5. Chabior A., Tymińska A., Pawlak A., Giordani A., Caforio A., Grabowski M., Ozierański K. Advances in myocarditis management in the light of the latest research and recent guidelines of the European Society of Cardiology. Cardiol J. 2024. № 31 (2). Р. 342–351. DOI: https://doi.org/10.5603/cj.95175.
6. Lv H., Lipes M.A. Role of impaired central tolerance to α-myosin in inflammatory heart disease. Trends Cardiovasc Med. 2012. № 22 (5). Р. 113–117. DOI: https://doi.org/10.1016/ j.tcm.2012.07.005.
7. Bruestle K., Hackner K., Kreye G., Heidecker B. Autoimmunity in Acute Myocarditis: How Immunopathogenesis Steers New Directions for Diagnosis and Treatment. Curr Cardiol Rep. 2020. № 22 (5). Р. 28. DOI: https://doi.org/10.1007/ s11886-020-01278-1.
8. Magnani S., Muser D., Carugo S. Editorial commentary: Acute myocarditis: An overview on emerging evidence. Trends Cardiovasc Med. 2021. № 31 (6). Р. 380–381. DOI: https://doi.org/10.1016/j.tcm.2020.07.003.
9. Chyzh M.O., Halchenko S.E., Hladkykh F.V., Byzov V.V., Rohoza L.A., Bielochkina I.V., Sleta I.V. Acellular Cryopreserved Biological Agents: Technology of Production and Composition Analysis: monograph. Vinnytsia: Tvory, 2024. 264 p. DOI: https://doi.org/10.46879/2024.1.
10. Hladkykh F.V. Evaluation of Tentative and Research Activity in Rats with Experimental Allergic Encephalomyelitis Against the Administration of Cell-Free Cryopreserved Biological Agents. Psychiatry, Neurology and Medical Psychology. 2024. № 11 (2(24)). Р. 124–137. DOI: https://doi.org/10.26565/ 2312-5675-2024-24-02.
11. Hladkykh F.V. Characteristics of the Impact of Acellular Cryopreserved Biological Agents on Antioxidant-Prooxidant Homeostasis in Heart Tissues in a Model of Autoimmune Myocarditis. Health & Education. 2024. № 2. Р. 23–30. DOI: https://doi.org/10.32782/health-2024.2.4.
12. Hladkykh F.V. Biochemical assessment of the inflammatory process activity under the influence of cell-free cryopreserved biological agents in a rat model of autoimmune arthritis. Modern Medicine, Pharmacy, and Psychological Health. 2024. № 1 (15). Р. 8–12. DOI: https://doi.org/10.32689/2663-0672-2024-1-1.
13. Hladkykh F.V., Lyadova T.I., Solovyiov S.O. Features of the Hepatocyte Cell Cycle in Experimental Autoimmune Hepatitis Under the Influence of Cryoextracts from Placenta and Spleen, as Well as the Conditioned Medium of Mesenchymal Stem Cells. Clinical and Preventive Medicine. 2024. Vol. 7. № 37. Р. 24–37. DOI: https://doi.org/10.31612/ 2616-4868.7.2024.03.
14. Hladkykh F.V., Liadova T.I. Experimental Study of Nephroprotective Properties of Cryoextracts of Placenta and Spleen, as Well as Conditioned Medium of Mesenchymal Stem Cells in Autoimmune Membranous Nephropathy. Ukraine. National Health. 2024. Vol. 3. № 77. Р. 106–114. DOI: https://doi.org/10.32782/ 2077-6594/2024.3/17.
15. Pavlenko H.P. Free Radical, Antioxidant, and Hemocoagulation Processes are Normal in Experimental Heart Pathology and Their Limitation by a Peptide Bioregulator. Dissertation Abstract. Kharkiv, 1993. 20 p.
16. Hladkykh F.V. Freund’s Adjuvant is a Classic of Vaccine Adjuvants and the Basis of Experimental Immunology. The Journal of V.N. Karazin Kharkiv National University. Series Medicine. 2024. № 32 (3(50)). Р. 414–439. DOI: https://doi.org/10.26565/2 313-6693-2024-50-10.
17. Freund J. Some Aspects of Active Immunization. Annual Review of Microbiology. 1947. № 1. Р. 291–308. DOI: https://doi.org/10.1146/annurev.mi.01.100147.001451.
18. Fontes J.A., Barin J.G., Talor M.V., Stickel N., Schaub J., Rose N.R., Cihakova D. Complete Freund’s Adjuvant Induces Experimental Autoimmune Myocarditis by Enhancing IL-6 Production During Initiation of the Immune Response. Immunity, Inflammation and Disease. 2017. № 5 (2). Р. 163–176. DOI: https://doi.org/10.1002/iid3.155.
19. Dzhihaliuk O.V., Stepaniuk H.I., Zaitchko N.V., Kovalenko S.I., Shabelnyk K.P. Characterization of the Effect of 4-[4-Oxo- 4H-Quinazolin-3-yl] Benzoic Acid (PK-66) on the Course of Adrenaline- Induced Myocardial Dystrophy in Rats Based on Biochemical Studies. Medical and Clinical Chemistry. 2016. № 18(4). Р. 16–22. DOI: https://doi.org/10.11603/mcch.2410-681X.2016.v0.i4.7249.
20. Rybolovlev Yu.R., Rybolovlev R.S. Dosage of Substances for Mammals According to Biological Activity Constants. Proceedings of the Academy of Sciences of the USSR. 1979. № 247 (6). Р. 1513–1516.
21. Shepitko V.I. Structural and Functional Indicators of the Cryopreserved Liver and the Effect of Its Transplantation on the Morphofunctional State of a Number of Internal Organs: Dissertation. Kharkiv, 2004. 326 p. URL: https://nrat.ukrintei.ua/ searchdoc/0504U000610.
22. Bespalova I.G. Peptide Composition and Biological Action of Extracts of Cryopreserved Pig Spleen Fragments and Piglet Skin. Dissertation. Kharkiv, 2016. 162 p. URL: https://nrat. ukrintei.ua/searchdoc/0416U004539.
23. Root-Bernstein R., Fairweather D. Unresolved Issues in Theories of Autoimmune Disease Using Myocarditis as a Framework. Journal of Theoretical Biology. 2015. № 375. Р. 101–123. DOI: https://doi.org/10.1016/j.jtbi.2014.11.022.
24. Chyzh M.O., Manchenko A.O., Trofimova A.V., Belochkina I.V. Ultrasound Assessment of Heart Remodelling Affected by Therapeutic Hypothermia and MSC on Myocardial Infarction Model. Ukrainian Journal of Radiology and Oncology. 2020. № 3(28). Р. 222–240. DOI: https://doi.org/10.46879/ ukroj.3.2020.222-240.
25. Chyzh M.O., Belochkina I.V., Globa V.Yu., Sleta I.V., Mikhailova I.P., Hladkykh F.V. Ultrasound Examination of Rat Hearts After Experimental Epinephrine-Induced Damage and the Application of Heart Xenoextract. The Journal of V.N. Karazin Kharkiv National University. Series Medicine. 2024. № 32(2 (49)). Р. 185–197. DOI: https://doi.org/10.26565/2313-6693-2 024-49-06.
26. Zar J.H. Biostatistical Analysis (5 ed.). Prentice-Hall, Englewood. 2014. 960 p.